Efeito de extratos de fungos isolados do trato digestório de bovinos em larvas e teleóginas de Rhipicephalus microplus resistentes a cipermetrina
DOI:
https://doi.org/10.17921/1415-6938.2025v29n1p15-29Resumo
O controle do carrapato bovino com acaricidas convencionais tem favorecido a resistência a acaricidas, o que tem fomentado a busca por métodos alternativos eficazes e seguros de controle desse ectoparasito. Fungos têm sido utilizados para o controle biológico, contudo pouco se conhece sobre a eficácia de fungos do trato digestório bovino no controle do carrapato bovino. Neste estudo, os objetivos foram selecionar fungos com metabólitos ativos para o controle de Rhipicephalus microplus. Foram avaliados os extratos de Trichoderma longibrachiatum e Aspergillus terreus e das leveduras Rhodotorula mucilaginosa e Pichia kudriavzevii. Os extratos foram obtidos a partir dos fungos em caldo Sabouraud Dextrose. Foram realizados biocarrapaticidograma e teste de pacote de larvas (TPL) para duas cepas do carrapato. Para a cepa Xangrilá foram avaliados extratos T. longibrachiatum (VN20) e A. terreus (VN15) que apresentaram baixa eficácia sobre o controle da atividade reprodutiva das teleóginas e sobre a mortalidade de larvas. Para a cepa do carrapato ICAMG foram avaliados os extratos de R. mucilaginosa (isolados V10S e V16S) e P. kudriavzevii (isolados V61 e V62). O filtrado do cultivo da levedura V16S (R. mucilaginosa) em uma baixa concentração (0,21 mg/mL) demonstrou 35% de eficiência para redução da atividade reprodutiva das teleóginas, o que fomenta futuros estudos para avaliar eficácia em maiores concentrações e diferentes formulações para o controle do carrapato bovino.
Downloads
Referências
ABBAS, R.Z. et al. Acaricide resistance in cattle ticks and approaches its management: the state of play. Vet. Parasitol., v.203, p.6-20, 2014. doi: 10.1016/j.vetpar.2014.03.006
ABRÃO, F.O. et al. Characterization of Fungi from Ruminal Fluid of Beef Cattle with Different Ages and Raised in Tropical Lignified Pastures. Curr. Microbiol., v.69, p.649–659, 2014. doi: 10.1007/s00284-014-0633-5
ALTSCHUL, S.F. et al. Gapped BLAST and PSI-BLAST: a new generation of protein database search programs. Nucleic Acids Res., v.25, p.3389-3402, 1997. doi: 10.1093/nar/25.17.3389.
ANDREOTTI, R. et al. Protective immunity against tick infestation in cattle vaccinated with recombinant trypsin inhibitor of Rhipicephalus microplus. Vaccine, v.30, p.6678-6685, 2012. doi: 10.1016/j.vaccine.2012.08.066.
BENNETT, G.F. Oviposition of Boophilus microplus (Canestrini) (Acarida: Ixodidae). I. Influence of tick size on egg production. Acarologia, v.16, p.52-61, 1974.
BERNARDO, J.T. et al. Isolamento on farm de Trichoderma: uma ferramenta no controle de doenças de solo para os agricultores no Brasil. Rev. Eletrôn. Cient. UERGS, v.5, p.263-270, 2019. doi: 10.21674/2448-0479.53.263-270.
BRASIL. Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. Legislação relacionada aos produtos de uso veterinário. Brasília: MAPA, 2012.
BRITO, F.S.; MILLER, P.R.M.; STADNIK, M. Presença de Trichoderma spp. em composto e suas características para o controle de fitopatógenos. Rev. Bras. Agroecol., v.5, p.43-53, 2010.
BURGAUD, G. et al. Deciphering the presence and activity of fungal communities in marine sediments using a model estuarine system. Aquat. Microb. Ecol., v.70, p.45-62, 2013. doi: 10.3354/ame01638.
CHAN, G.F. et al. Genome sequence of Pichia kudriavzevii M12, a potential producer of bioethanol and phytase. Eukaryot Cell, v.11, 2012. doi: 10.1128/EC.00229-12.
CHENG, Z. et al. Heat shock improves stress tolerance and biocontrol performance of Rhodotorula mucilaginosa. Biol. Control, v.95, p.49-56, 2016. doi: 10.1016/j.biocontrol.2016.01.001.
DJOUHRI, Y. et al. Susceptibility of nymphs and adults of Blattella germanica (Dictyoptera: Blattellidae) to Aspergillus terreus (Eurotiales: Trichocomaceae) infested via oral ingestion, contact, and bait methods: a comparative study. Appl. Entomol. Zool., v.57, p.137-145, 2022. doi: 10.1007/s13355-022-00776-8.
DOLENGA, C.J.R. et al. Acaricidal effect of major compounds to control Rhipicephalus microplus (Canestrini, 1887) in dairy cows and possible alternatives for reversing multidrug resistance. Rev. Bras. Parasitol. Vet., v.31, e005422, 2022. doi: 10.1590/S1984-29612022028.
DRUMMOND, R.O. et al. Boophilus annulatus and Boophilus microplus: laboratory test of insecticides. J. Econ. Entomol., v.66, p.130-133, 1973. doi: 10.1093/jee/66.1.130.
DUARTE, A.W.F. et al. Taxonomic assessment and enzymes production by yeasts isolated from marine and terrestrial Antarctic samples. Extremophiles, v.17, p.1023-1035, 2013. doi: 10.1007/s00792-013-0584-y.
EMBRAPA. Anuário do Leite 2020. Disponível em: embrapa.br/gado-de-leite. Acesso em: 02 dez. 2020.
FIGUEIREDO, J.C.G. et al. Effects of leaf extracts of Protium spruceanum against adult and larval Rhipicephalus microplus. Exp. Appl. Acarol., v.79, p.447-458, 2019. doi: 10.1007/s10493-019-00447-4
FREITAS, C.E.S. Potencial de fungos do trato digestório de ovinos para utilização como probiótico. Salvador: Universidade Estadual do Sudoeste da Bahia, 2018.
FURLONG, J. et al. O carrapato dos bovinos e a resistência: temos o que comemorar. Hora Vet., v.27, p.26-32, 2007.
GONZÁLEZ-ARENZANA, L. et al. Genetic and phenotypic intraspecific variability of non-Saccharomyces yeasts populations from La Rioja winegrowing region (Spain). J. Appl. Microbiol., v.122, p.378-388, 2017. doi: 10.1111/jam.13341.
GRISI, L. et al. Reassessment of the potential economic impact of cattle parasites in Brazil. Braz. J. Vet. Parasitol., v.23, p.150-156, 2014. doi: 10.1590/S1984-29612014042.
HOFFMAN, C.S.; WINSTON, F. A ten-minute DNA preparation from yeast efficiently releases autonomous plasmids for transformation of Escherichia coli. Gene, v.57, p.267-272, 1987. doi: 10.1016/0378-1119(87)90131-4.
IBGE. Produção da Pecuária Municipal 2021. Rio de Janeiro: IBGE, 2022.
JONES, G.A. Seleção de isolados de Metarhizium spp. para o controle do carrapato Rhipicephalus microplus: ensaios in vitro da virulência e conidiogênese. Rio de Janeiro: UFRRJ, 2017.
KLAFKE, G. et al. Multiple resistance to acaricides in field populations of Rhipicephalus microplus from Rio Grande do Sul state, Southern Brazil. Ticks Tick-borne Dis., v.8, p.73-80, 2017. doi: 10.1016/j.ttbdis.2016.09.019.
LAING, G. et al. Control of Cattle Ticks and Tick-Borne Diseases by Acaricide in Southern Province of Zambia: a retrospective evaluation of animal health measures according to current one health concepts. Front. Public Health, v.6, p.45, 2018. doi: 10.3389/fpubh.2018.00045.
LATA, P. et al. In vitro evaluation of probiotic potential and enzymatic profiling of Pichia kudriavzevii Y33 isolated from traditional home-made mango pickle. J. Genet. Eng. Biotechnol., v.20, p.1-10, 2022. doi: 10.1186/s43141-022-00416-2.
LIBKIND, D. et al. Studies on the heterogeneity of the carotenogenic yeast Rhodotorula mucilaginosa from Patagonia, Argentina. J. Basic Microbiol., v.48, p.93-98, 2008. doi: 10.1002/jobm.200700257.
LIU, J. et al. Utilization of antagonistic yeasts to manage postharvest fungal diseases of fruit. Int. J. Food Microbiol., v.167, p.153-160, 2013. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2013.09.004.
MACH, R.; ZEILINGER, S. Regulation of gene expression in industrial fungi: Trichoderma. Appl. Microbiol. Biotechnol., v.60, p.515-522, 2003. doi: 10.1007/s00253-002-1162-x.
MAIA FILHO, F.S. et al. Trichoderma virens as a biocontrol of Toxocara canis: In vivo evaluation. Rev. Iberoam. Micol., v.34, p.32-35, 2017. doi: 10.1016/j.riam.2016.06.004.
MARTINS JÚNIOR, V.S. et al. Seleção de fungos celulolíticos do intestino grosso de borregos e ovelhas criados em pastagens tropicais. Ens. Ciênc. C Biol. Agrar. Saúde, v.27, n.2, p.167-171, 2023. doi: 10.17921/1415-6938.2023v27n2p167-171.
MASIH, E.I. et al. Characterisation of the yeast Pichia membranifaciens and its possible use in the biological control of Botrytis cinerea, causing the grey mould disease of grapevine. FEMS Microbiol. Lett., v.202, p.227-232, 2001. doi: 10.1111/j.1574-6968.2001.tb10808.x.
MIRANDA-MIRANDA, E. et al. Natural occurrence of lethal aspergillosis in the cattle tick Rhipicephalus (Boophilus) microplus (Acari Ixodidae). Parasitol., v.139, p.259-263, 2012. doi: 10.1017/S0031182011001843.
MOLENTO, M.B. Avaliação seletiva de bovinos para controle do Rhipicephalus microplus. ARS Vet., v.36, p.01-02, 2020. doi:10.15361/2175-0106.2020v36n1p01-02.
MUKHERJEE, P.K.; NAUTIYAL, C.S.; MUKHOPADHYAY, A.N. Molecular Mechanisms of Biocontrol by Trichoderma spp. In: Molecular mechanisms of plant and microbe coexistence. Soil Biol., v.15, p.243-262, 2008. doi: 10.1007/978-3-540-75575-3_10.
MUNIZ, E.R. et al. Efficacy of Metarhizium anisopliae conidia in oil-in-water emulsion against the tick Rhipicephalus microplus under heat and dry conditions. BioControl, v.65, p.339-351, 2020. doi: 10.1007/s10526-020-10002-5.
NERY, P.S. et al. Effects of Anacardium humile leaf extracts on the development of gastrointestinal nematode larvae of sheep. Vet. Parasitol., v.171, p.361-364, 2010. doi: 10.1016/j.vetpar.2010.03.043.
PAVANI, C.D. Potencial biotecnológico do metagenoma de rúmen bovino da raça nelore (Bos tauros indicus), visando à desconstrução da biomassa vegetal. São Paulo: Universidade Estadual Paulista, 2017.
RIVERA, A.P.T. et al. Efectividad de Beauveria bassiana (Baubassil®) sobre la garrapata común del ganado bovino Rhipicephalus microplus en el Departamento de la Guajira, Colombia. Rev. Argent. Microbiol., v.50, p.426-430, 2018. doi: 10.1016/j.ram.2017.10.005.
SAEG, Sistema para Análises Estatísticas, 2007. Versão 9.1. Viçosa: Fundação Arthur Bernardes, 2007.
SAMISH, M. et al. Efficacy of the entomopathogenic fungus Metarhizium brunneum in controlling the tick Rhipicephalus annulatus under field conditions. Vet. Parasitol., v.206, p.258-266, 2014. doi: 10.1016/j.vetpar.2014.10.019.
SEIFI, Z. et al. Extracellular enzymes production and biofilm formation in Rhodotorula species. Curr. Enzyme Inhib., v.12, p.155-160, 2016.
SHAHID, A.A. et al. Entomopathogenic fungi as biological controllers: new insights into their virulence and pathogenicity. Arch. Biol. Sci., v.64, p.21-42, 2012. doi: 10.2298/ABS1201021S.
SILVA, T.P.P.; MOREIRA, J.C.; PERES, F. Serão os carrapaticidas agrotóxicos? Implicações na saúde e na percepção de riscos de trabalhadores da pecuária leiteira. Ciênc. Saúde Coletiva, v.17, p.311-325, 2012. doi: 10.1590/S1413-81232012000200006.
SINGH, D.; RAINA, T.K.; SINGH, J. Entomopathogenic fungi: An effective biocontrol agent for management of insect populations naturally. J. Pharm. Sci. Res., v.9, p.833, 2017.
STACKEBRANDT, E.; GOEBEL, B.M. Taxonomic note: a place for DNA-DNA Reassociation and 16s rRNA Sequence Analysis in the Present species definition in bacteriology. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., v.44, p.846-849, 1994. doi: 10.1099/00207713-44-4-846.
STONE, B.F.; HAYDOCK, K.P. A method for measuring the acaricide susceptibility of the cattle tick Boophilus microplus. Bull. Entomol. Res., v.53, p.563-578, 1962. doi: 10.1017/S000748530004832X.
SUN, M. et al. Effectiveness of Beauveria bassiana sensu lato strains for biological control against Rhipicephalus (Boophilus) microplus (Acari: Ixodidae) in China. Parasitol. Int., v.62, p.412-415, 2013. doi: 10.1016/j.parint.2013.04.008.
VAZ JUNIOR, I.S.; SEIXAS, A.; MASUDA, A. Pesquisa para uma Vacina contra o Carrapato. In: TÓPICOS AVANÇADOS EM ENTOMOLOGIA MOLECULAR. INCT-EM, 2012. p.1-27.
VIEIRA, T.M. et al. Fungi extract in the inhibition of the egg hatching and larval development of the Haemonchus contortus. Afr. J. Microbiol. Res., v.10, p.1044-1050, 2016. doi: 10.5897/AJMR2016.8027.
WARD, O.P. et al. Physiology and biotechnology of Aspergillus. Adv. Appl. Microbiol., v.58, p.1-75, 2005. doi: 10.1016/S0065-2164(05)58001-8.
WELSH, J.A. et al. Production-related contaminants (pesticides, antibiotics and hormones) in organic and conventionally produced milk samples sold in the USA. Public Health Nutr., v.22, p.2972-2980, 2019. doi: 10.1017/S136898001900106X.
WHITE, T.J. et al. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: INNIS, M.A. et al. PCR Protocols: a guide to methods and applications. San Diego: Academic Press, 1990. p.315-322.
ZAHRAN, Z. et al. Laboratory efficacy of mycoparasitic fungi (Aspergillus tubingensis and Trichoderma harzianum) against tropical bed bugs (Cimex hemipterus) (Hemiptera: Cimicidae). Asian Pac. J. Trop. Biomed., v.7, p.288-293, 2017. doi: 10.1016/j.apjtb.2016.12.021.
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2025 Neyller Lima Figueiredo, Eduardo Robson Duarte, Valdo Soares Martins Júnior, Viviane De Oliveira Vasconcelos, Ricardo Nascimento Araújo, Daniel Sobreira Rodrigues

Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.